Forschung

Die bisherige Entwicklung der REPULS® Lichtmedizintechnik war nur durch intensive Forschung möglich. REPULS® investiert hier  kontinuierlich, da zur Zukunftssicherung und zur weiteren Expansion die Intensivierung von Forschung und darauf aufbauend die Entwicklung neuer Produkte eine unerlässliche Bedingung ist.

REPULS® Lichtmedizintechnik GmbH ist es gelungen, zwei große Forschungs- und Entwicklungsvorhaben zur Förderung durch die FFG (Forschungsförderungsgesellschaft) vorzulegen. Die Förderung erfolgt im Rahmen der Programmlinie „Bridgeprogramm und Basisprogramme“ der FFG. Dafür ist unser Unternehmen hinsichtlich Organisation und Management evaluiert und als geeignet für die Durchführung von F&E-Arbeiten eingeschätzt worden.

Forschungs-Cluster

LED – Zukunftstechnologie in der Medizin

Biostimulation mit LED

Lichtinduzierte Biostimulation wurde lange Zeit nur mit Laser durchgeführt und erforscht. Mit der Entwicklung hochintensiver Leuchtdioden (LEDs) wurden in den letzten Jahren Lichtquellen verfügbar, die einfarbiges Licht in ähnlicher Intensität wie Therapielaser zur Verfügung stellen können

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Unterschied Laser zu LED (repuls®)

Ausgehend von der Tatsache, dass repuls® ähnliche Wirkungen wie Laser im Bereich bis 400 mW aufweist (signifikante biostimulierende Effekte) und zusätzlich die Behandlung von Entzündungen über die Beeinflussung der Leukotriene ermöglicht, kann über einen längeren Zeitraum mit dieser hohen Intensität ohne Nebenwirkungen bestrahlt werden.

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Publikationen zu repuls®

Die Wirkung von repuls® auf Endothelzellen und Vasculogenese.

Rohringer, W. Holnthoner, P. Slezak, S. Chaudary, M. Strassl, E. Priglinger, K. Pill, S. Mühleder, H. Redl, P. Dungel,

Ludwig Boltzmann Institut für experimentelle und klinische Traumatologie, 1200 Wien

Dr. Christoph Busch, Dr. Pierre Raeven, Dr. Georg Bezard, Dr. Shady El-Marto, Dr. Daniel Busch, Dr. Jürgen Reichetseder, Univ. Prof. DDr. Martijn van Griensven§, Univ. Prof. Dr.

Harald Hertz Unfallkrankenhaus der AUVA Lorenz Böhler Wien,

S. Chaudary, S. Dimitrescu, A. Weidinger, H. Redl, P. Dungel

Ludwig Boltzmann Institute for Experimental and Clinical Traumatology, Donaueschingenstrasse 13, 1200 Vienna, Austria

2 Austrian Cluster for Tissue Regeneration, Vienna, Austria

06/2013

S. Chaudary, C.Wagner, S.Rieger, S. Dimitrescu, A. Weidinger, H. Redl, P. Dungel

Ludwig B

Boltzmann Institut für experimentelle und klinische Traumatologie

04/2015

Priglinger E.1,2*, Maier J.1,2*, Chaudary S.1,2, Lindner C.1,2, Wurzer C.1,2,3, Rieger S.1,2, Redl H.1,2, Wolbank S.1,2, Dungel P.1,2

1. Ludwig Boltzmann Institute for Experimental and Clinical Traumatology, AUVA Research Center, Linz/Vienna, Austria

2. Austrian Cluster for Tissue Regeneration, Vienna, Austria

3. Liporegena GmbH, Breitenfurt, Austria, 2018

Placebokontrollierte Parallel–Gruppenstudie, Anzahl der Patienten: n = 305 Zahnextraktionen, Wurzelspitzenresektionen,Implantationen, Osteotomie (von Weisheitszähnen oder verlagerten Zähnen), Vestibuloplastiken, Lippenbändchen, parodontale chirurgische Eingriffe

G.Volland, Th.Gressmann

Ludwig Boltzmann Institute for Experimental and Clinical Traumatology, Donaueschingenstrasse 13, 1200 Vienna, Austria

2 Austrian Cluster for Tissue Regeneration, Vienna, Austria

Sabrina Rohringer1,2,#, Wolfgang Holnthoner1,2, Paul Slezak1,2, Sidrah Chaudary1,2, Martin Strassl3,Eleni Oberbauer1,2, Heinz Redl1,2, Peter Dungel1,2*

Kurt Schicho1, Peter Dungel2, Frederike Reischies3, Raimund Winter3, Michael Figl4, Nassim Ghaffary Tabrizi-Wizsy5, Christian Smolle3, 5, Robert Pillerstorff1, Rudolf Seemann1

1. Medizinische Universität Wien, Universitätsklinik für Mund-, Kiefer- und Gesichtschirurgie

2. Ludwig Boltzmann Institut für experimentelle und klinische Traumatologie, Wien,

3. Medizinische Universität Graz, Klinische Abteilung für plastische, ästhetische und rekonstruktive Chirurgie,

4.  Medizinische Universität Wien, Zentrum für Medizinische Physik und Biomedizinische Technik,

5. Medizinische Universität Graz, Institut für Pathophysiologie

  • Wundheilung mit Repuls bei Abdominoplastiken (Beltlift), Med Uni Graz
  • Quantitative Schmerzmessung, Med Uni Graz
  • Sehnenregeneration, Paracelsus Medizinische Privatuniversität Salzburg, Institut für Sehnen- und Knochenregeneration

Bjordal, JM; Couppé, C; Chow, RT; et al. A systematic review of low level laser therapy with location-specific doses for pain from chronic joint disorders. 2003. The Australian journal of physiotherapy. 49 (2): 107–16. Borges LS, Cerqueira M, Dos Santos Rocha JA, et al. Light-emitting diode phototherapy improves muscle recovery after a damaging exercise. November 2013Lasers in Medical Science 29(3) Borsa PA, KA Larkin and JM True. Does phototherapy enhance skeletal muscle contractile function and postexercise recovery? A systematic review. J Athl Train. 48. 2013. 57-67. 10.4085/1062-6050-48.1.12  Brosseau, L.; Welch, V.; Wells, et al. Low level laser therapy (Classes I, II and III) for treating rheumatoid arthritis". 2005. Cochrane Database of Systematic Reviews (4): CD002049. doi:10.1002/14651858.CD002049.pub2. PMID 16235295. Chow, R.; Johnson, M.; Lopes-Martins, R.; et al. Efficacy of low-level laser therapy in the management of neck pain: a systematic review and meta-analysis of randomised placebo or active-treatment controlled trials. 2009 Lancet. 374 (9705): 1897–1908. doi:10.1016/S01406736(09)61522-1. PMID 19913903. Crawford PA, Crowley JR, Sambandam N, et al. Regulation of myocardial ketone body metabolism by the gut microbiota during nutrient deprivation. Proc Natl Acad Sci U S A. 2009 Jul 7;106(27):11276-81. doi: 10.1073/pnas.0902366106. Epub 2009 Jun 22. De Marchi T, VM Schmitt, GP Machado, et al. Does photobiomodulation therapy is better than cryotherapy in muscle recovery after a high-intensity exercise? A randomized, doubleblind, placebo-controlled clinical trial. Lasers Med Sci. 32. 2017. 429-437. 10.1007/s10103016-2139-9 De Melo CA, AN Alves, SM Terena, et al. Light-emitting diode therapy increases collagen deposition during the repair process of skeletal muscle. Lasers Med Sci. 31. 2016. 531-8. 10.1007/s10103-016-1888-9 De Oliveira AR, AA Vanin, SS Tomazoni, et al. Pre-Exercise Infrared Photobiomodulation Therapy (810 nm) in Skeletal Muscle Performance and Postexercise Recovery in Humans: What Is the Optimal Power Output? Photomed Laser Surg. 35. 2017. 595-603. 10.1089/pho.2017.4343 Diegelmann RF1, Evans MC. Wound healing: an overview of acute, fibrotic and delayed healing. Front Biosci. 2004 Jan 1;9:283-9. Douris P, V Southard, R Ferrigi, et al. Effect of phototherapy on delayed onset muscle soreness. Photomed Laser Surg. 24. 2006. 377-82. 10.1089/pho.2006.24.377 Ferraresi C, YY Huang and MR Hamblin. Photobiomodulation in human muscle tissue: an advantage in sports performance? J Biophotonics. 9. 2016. 1273-1299. 10.1002/jbio.201600176 Góralczyk K, Szymańska J, Lukowicz M, et al. Effect of LLLT on endothelial cells culture. Lasers Med Sci. 2015 Jan;30(1):273-8. doi: 10.1007/s10103-014-1650-0. Epub 2014 Sep 18. Hobson B, Denekamp J. Endothelial proliferation in tumours and normal tissues: continuous labelling studies. Br J Cancer. 1984 Apr;49(4):405-13. Jain M, Nilsson R, Sharma S, et al. Metabolite profiling identifies a key role for glycine in rapid cancer cell proliferation. Science. 2012 May 25;336(6084):1040-4. doi: 10.1126/science.1218595. Jamtvedt, G.; Dahm, K. T.; Christie, A.; et al. Physical Therapy Interventions for Patients with Osteoarthritis of the Knee: an Overview of Systematic Reviews. 2007 Physical Therapy. 88 (1): 123–136. doi:10.2522/ptj.20070043. PMID 17986496. Kelencz CA, IS Munoz, CF Amorim, et al. Effect of low-power gallium-aluminum-arsenium noncoherent light (640 nm) on muscle activity: a clinical study. Photomed Laser Surg. 28. 2010. 647-52. 10.1089/pho.2008.2467

 

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